肠道致病菌测体论文

沙门菌属、志贺菌属、侵袭性大肠埃希菌、肠产毒素大肠埃希菌是常见的引起人类和动物细菌性痢疾和细菌性食物中毒的肠道致病菌，严重的危害着人类健康和牲畜的平安〔1〕。因此，建立一种快速、简便、准确、特异地检测方法具有重要意义。目前常见病原菌的检验方法存在着检测周期长、工作量大、所需试剂多，而且假阴性率高，灵敏度低，或假阳性率高，特异性差等缺点。PCR技术提供了理想的检测方法。本实验采用多重PCR方法，可在同一反应体系中检测不同的细菌，整个过程只需要2～3h，应用前景广阔。

1材料和方法

11实验菌株肠炎沙门菌、阿柏丁沙门菌，鸡雏沙门菌，德尔比沙门菌、鼠伤寒沙菌，福氏志贺2a，福氏志贺2b，宋氏志贺菌，枸缘酸杆菌，变形杆菌，河弧菌，金黄色葡萄球菌，枯草芽孢杆菌(四川省疾病预防控制中心)；产毒素大肠埃希菌C83921，产毒素大肠埃希菌C83902（中国兽医药品监察所）；侵袭性大肠埃希菌（中国生物制品探究所）。

12试剂染料、缓冲溶液、TaqDNA聚合酶、dNTPs、核酸染料(GV)、琼脂糖、Marker等(北京塞百盛基因技术公司)。

13主要设备PCR基因扩增仪、台式高速离心机、紫外可见凝胶成像系统、核酸分析仪、微量加样枪(德国Eppendorf公司)；电泳槽、DYY-2稳压稳流电泳仪(北京市六一仪器厂)。

14方法

141引物设计沙门菌组氨酸转运操纵子基因片段具有沙门菌属特异性〔2-4〕，根据GenebankV01373提供的基因序列设计引物，即引物1摘要:5′-ACTGGCGTTATCCCTTTCTCTGGTG-3′；引物2摘要:5′-ATGTTGTCCTGCCCCTGGTAAGAGA-3′由于ipaH基因存在于所有志贺菌属和侵袭性大肠埃希菌（EIEC）的质粒和染色体上〔5〕，根据GenebankM32063提供的序列设计志贺菌和EIEC引物,引物序列为摘要:引物1摘要：5′-TGTATCACAGATATGGCATGC-3′；引物2摘要：5′-TCCGGAGATTGTTCCATGTG-3′。选择不耐热肠毒素(LT)的编码基因保守区〔6〕，根据GenebankS60731提供的序列设计一对引物为摘要：引物1摘要：5′-GCGTTACTATCCTCTCTATGTG-3′引物2摘要：5′-AGTTTTCCATACTGATTGCCGC-3′。

142DNA模板的提取采用热裂解法，取细菌培养液10ml,置于Eppendorf管中,8000r／min，灭菌蒸馏水洗涤2次,最后用1ml蒸馏水悬浮,隔水煮沸10min,8000r／min，离心10min,取上清,即为DNA模板溶液。

143多重PCR扩增条件的优化通过多次试验先确定了变化较小的因素buffer,dNTP,再对影响较大的因素如MgCl2浓度、引物浓度、Taq酶用量、模板浓度，在1个范围内做正交实验，再进行局部微调，最后调整退火温度和循环数参数等。取PCR产物5μl及DNAMarker参照物在含有(GV)的1%琼脂糖凝胶中电泳，电压75V,电泳40min后在紫外灯下观察结果。

144多重PCR体系的特异性、灵敏度、样品检测(1)特异性检测摘要：9株标准目的菌株和7株非目的菌株,提取DNA模板,然后进行PCR扩增，电泳后观察有无条带的出现。(2)灵敏度检测摘要：将从目的菌株提取的DNA模板用核酸分析仪测定DNA含量,然后作10倍梯度稀释,取每个稀释度的DNA进行PCR扩增,电泳后观察条带的亮度,直到不出现扩增带为止。(3)样品的检测摘要：从牛肉中分离的可疑菌株,提取DNA模板,进行多重PCR扩增。同时,按常规进行生化检验和玻板凝集试验。

145PCR试剂盒组成经反复试验,组装多重PCR试剂盒。包括PCR反应管,PCR反应液［染料，缓冲溶液（Mg2+），dNTP，引物］,琼脂糖粉,GoldView染料，Taq酶,阳性对照,阴性对照,液体石蜡。

2结果

21PCR反应条件的优化反应体积50μl,10×buffer5μl，引物各025μl（50μmol/L）,Taq聚合酶08μl(5U/μl),dNTPs2μl（10mmol/L）,粗提DNA模板各1μl。扩增条件摘要:94℃预变性4min,94℃变性45s,退火58℃40s,延伸72℃60s,32个循环，最后72℃保温5min，见图1。

1摘要：肠炎沙门菌；2摘要：阿柏丁沙门菌；3摘要：鸡雏沙门菌；4摘要：德尔比沙门菌；5摘要：鼠伤寒沙门菌；6摘要：产毒素大肠埃希菌C83902；7摘要：产毒素大肠埃希菌C83902；8摘要：福氏志贺2a；9摘要：福氏志贺2b；10摘要：宋氏志贺；11摘要：侵袭性大肠埃希菌；12摘要：肠炎沙门菌+产毒素大肠埃希菌；13摘要：产毒素大肠埃希菌+福氏志贺2a；14摘要：肠炎沙门菌+福氏志贺2a；15摘要：福氏志贺2a+肠炎沙门菌+产毒素大肠埃希菌；16摘要：肠炎沙门菌+产毒素大肠埃希菌+福氏志贺2a；17摘要：肠炎沙门菌+产毒素大肠埃希菌+福氏志贺2a

图1多重PCR反应检测结果（略）

22特异性用所建立的方法检测沙门菌、志贺菌属、侵袭性大肠埃希菌、肠产毒素大肠埃希菌均扩增出特异的、和预期结果相符的DN段,未见非特异性扩增带，且其他的非目的菌株未扩增出条带。

23灵敏度单独及多重PCR体系中几种菌的灵敏度均达到10-8fg/μl,两体系灵敏度一致,即沙门菌属为913×10-8fg/μl，志贺菌属（侵袭性大肠埃希菌）为723×10-8fg/μl，肠产毒素大肠埃希菌234×10-8fg/μl，见图2。

M摘要：DNAMarker；1～4摘要：各模板DNA稀释度分别为10-1，10-2，10-3，10-4倍

图2多重PCR反应灵敏度检测结果（略）

24牛肉中志贺菌的检测用多重PCR方法从牛肉中共检测出9个阳性样品。经国家标准卫生检验方法验证均为阳性〔7〕。

25试剂盒稳定性和重复性除Taq酶,PCR反应液,阴、阳性模板置-20℃贮存外,其余试剂均4℃条件下贮存。在贮存时间为30，60，90，120，150，180，210，240，270和300d时取出,用已知PCR阳性样品检测试剂盒的稳定性,结果直到300d,样品PCR仍呈阳性,说明该试剂盒的有效期在300d以上。此外,PCR阳性样品用试剂盒重复试验3次,结果均为阳性;而PCR阴性样品重复试验3次,均为阴性。说明该试剂盒的重复性好。

3讨论

本探究在于应用多重PCR快速检测肠道致病菌，考虑到引物间的配对、引物间的竞争性扩增、退火温度等均可影响多重PCR的扩增效果〔8〕，因此，查找的序列均具有很强的保守性，设计的3对引物之间不能相互配对，形成二聚体或发夹结构，Tm值基本一致等。对选取的目的菌株和非目的菌株同时进行PCR扩增,结果目的菌株均显示出特异扩增,而所有非目的菌株均不出现扩增条带,说明引物具有很强的特异性。多重PCR影响因素复杂,不同的引物、模板、引物浓度、模板浓度、Mg2+浓度、dNTP浓度及其比例、缓冲液成分和浓度、反应体系、循环参数等会产生复杂的综合效应〔9〕。本体系中10×buffer,dNTPs,模板量等对多重扩增的影响不大,Taq酶、引物、Mg2+浓度、循环次数、退火温度等对PCR反应的特异性和反应效率影响较大。通过优化PCR反应体系和条件,使实验效果达到了最佳，且几种细菌随机组合的扩增也获成功,未出现相互间强抑制现象。PCR试剂盒的稳定性和重复性试验表明,该试剂盒重复性好,有效期长,特异性强，灵敏度高，结果准确,对待检样品要求不高,检测时间更短等。通过对牛肉样品的检测,显示PCR法阳性率明显高于培养法,且培养法阳性的样品,PCR法均为阳性,说明试验结果可靠。因此,该试剂盒有一定的应用价值,可在生产生活中推广应用。

【参考文献

〔1〕韩文瑜.病原细菌检验技术［M］.长春摘要：吉林科学技术出版社,1992摘要：1-78.

〔2〕CohenND,NeibergsHL,MegruderED,etal.Genus-specificdetectionofSalmonellaeusingthepolymerasechainreaction(PCR)［J］.JVetDiagnInvest,1993,5(3)摘要:368-371.

〔3〕CohenND,WallisDE,NeibergsHL,parisonofthepolymerasechainreactionusinggenus-specificoligonucleotideprimersandmicrobiologycultureforthedetectionofSalmonelaindrag-swabsfrompoultryhouses［J］.PoultSci,1994,73(8)摘要:1276-1281.

〔4〕CohenND,McgruderED,NeibergsHL,etal.DetectionofSalmonellaenteritidisinfecesfrompoultryusingboosterpolymerasechainreactionandoligonucleotideprimersspecificforallmembersofthegenusSalmonella［J］.PoultSci,1994,73(2)摘要:354-357.

〔5〕VenkatesanMM,BuysseJM,kopeckoDY.UseofshigellaflexneryipaCandipaHgenesequenceforthegeneralidentificationofshigellaspp.andenterioinvasiveE.coli［J］.JClinMicrobiol,1989,27摘要:2671-2691.

〔6〕Stacy-phippsS,MeccaJJ,WeissJB.MultiplexPCRassayandsimplepreparationmethodforstoolspecimensdetectEnterotoxigenicEscherichiacoliDNAduringcourseofinfection［J］.JClinMicrobiol,1995,33摘要:1054-1059.

〔7〕罗雪云，刘宏道，周桂莲，等.食品微生物检验标准手册［M］.北京摘要：中国标准出版社，1995摘要：58-66.

〔8〕黄银花,胡晓湘,徐慰倬,等.影响多重PCR扩增效果的因素［J］.遗传,2003,25(1)摘要:65-68.

〔9〕张学敏，王宜强.靶向新基因的分子克隆策略—理论和方法［M］.北京摘要:军事医学科学院出版社,1999摘要：1-11.